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Parasites & Vectors Band 16, Artikelnummer: 49 (2023) Diesen Artikel zitieren
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Details zu den Metriken
Toxocara canis und Toxocara cati sind Darmparasiten von Hunden, Katzen und Füchsen, wobei infizierte Tiere Eier des Parasiten mit ihrem Kot ausscheiden. Wenn Menschen versehentlich embryonierte Toxocara spp. Eier aus der Umwelt können schwerwiegende klinische Folgen haben, einschließlich Blindheit und Hirnschäden. Frühere Arbeiten haben das Vorhandensein von Toxocara spp. nachgewiesen. Eier auf Gemüseprodukten, die im Vereinigten Königreich angebaut werden, jedoch nur in kleinen Gemeinschaftsgärten. Ziel dieser Studie war es festzustellen, ob Toxocara spp. Eier sind auch auf Gemüse vorhanden, das auf kommerziellen Farmen im Vereinigten Königreich angebaut wird, die eine größere Zahl von Menschen mit Produkten versorgen.
Insgesamt 120 Proben (je 300 g) Spinat (Spinacia oleracea) wurden auf vier Farmen im Süden Englands, Großbritannien, gesammelt. Die Proben wurden mithilfe eines Siebansatzes verarbeitet, gefolgt von einer quantitativen Multiplex-Polymerase-Kettenreaktionsanalyse.
Insgesamt waren 23,0 % der Proben positiv für T. canis (28/120; 95 %-Konfidenzintervall 16,7–31,7 %) und 1,7 % für T. cati (2/120; 95 %-Konfidenzintervall 0,5–5,9 %). Es gab einen statistisch signifikanten Unterschied in der Anzahl positiver Proben zwischen den Betrieben (P = 0,0064). Nach unserem Kenntnisstand ist dies der erste Bericht über die Isolierung von Toxocara spp. aus Gemüse, das auf kommerziellen Farmen im Vereinigten Königreich angebaut wird.
Die Ergebnisse dieser Studie unterstreichen die Notwendigkeit eines gründlichen Waschens von Gemüse vor dem Verzehr, insbesondere von Gemüse wie Spinat, das ohne vorheriges Schälen oder Kochen verzehrt werden kann, sowie wirksamer Biosicherheitsmaßnahmen für landwirtschaftliche Betriebe, um den Zugang von Endwirtsarten von Toxocara zu Ackerland zu minimieren spp.
Toxocara canis und Toxocara cati sind zoonotische Spulwurmparasiten, die im Darmtrakt infizierter Hunde, Katzen und Füchse leben. Große Mengen an Toxocara spp. Eier können mit dem Kot infizierter Tiere ausgeschieden werden [1], die anschließend die Umwelt kontaminieren und infektiös werden. Wenn embryonierte Toxocara spp. Werden Eier von anderen Tierarten als ihrem endgültigen Wirt oder einem Menschen aufgenommen, können die Larven ihre Entwicklung nicht abschließen und wandern stattdessen an verschiedene Stellen im Körper. Beim Menschen kann dies zu schweren pathologischen und schwächenden klinischen Manifestationen führen, einschließlich Blindheit und neurologischen Störungen [2].
Es ist seit einiger Zeit bekannt, dass Böden, die mit infektiösen Toxocara-Arten kontaminiert sind, vorkommen. Eier können nach versehentlichem Verzehr zu einer Infektion des Menschen führen, aber neuere Arbeiten haben auch das Vorhandensein von Eiern auf Produkten gezeigt, die für den menschlichen Verzehr bestimmt sind [3, 4]. Zum Beispiel Toxocara spp. In einer auf den Philippinen durchgeführten Studie wurden bei 4,8 % der untersuchten Gemüsesorten Eier nachgewiesen, wobei sich herausstellte, dass Blattgemüse am stärksten kontaminiert war [5], und in einer brasilianischen Studie wurden 17,8 % der untersuchten Salate (Lactuca sativa) als positiv befunden Toxocara spp. Eier [6]. Darüber hinaus berichteten zwei kürzlich durchgeführte systematische Übersichten und Metaanalysen zur Bewertung der weltweiten Inzidenz der Helminthenkontamination von Obst und Gemüse über gepoolte Toxocara spp. Prävalenzen von 7 % [7] bzw. 6 % [8]. Die Tatsache, dass es unseres Wissens derzeit nur eine Studie aus Großbritannien zur Kontamination von Gemüse mit Toxocara spp. Eier, die an Produkten durchgeführt wurden, die in kleinem Maßstab auf öffentlichem Land angebaut wurden [9], unterstreichen die Notwendigkeit weiterer Forschung, um im Vereinigten Königreich angebaute Produkte auf diese Parasiten zu untersuchen.
Das Ziel dieser Studie bestand darin, festzustellen, ob Produkte, die auf Feldern größerer kommerzieller Produzenten im Süden Englands (Vereinigtes Königreich) angebaut werden, ebenfalls mit Toxocara spp. kontaminiert sein könnten. Eier und stellen daher bei ungewaschenem Verzehr eine Gefahr für eine größere Zahl von Verbrauchern dar. Spinat (Spinacia oleracea) wurde für die Tests aufgrund seiner Verfügbarkeit in Gemüseanbaubetrieben, seines Potenzials für den Rohverzehr durch den Menschen und seiner blättrigen Natur ausgewählt, eine Eigenschaft, die mit einer verbesserten Bodenbindung und einer höheren Wahrscheinlichkeit von Toxocara spp. in Verbindung gebracht wird. Eikontamination [5, 10].
Für die Studie wurden vier große kommerzielle Gemüsefarmen (mit einer Größe von 16 bis 62 ha) in den südlichen Grafschaften Surrey, Berkshire, Greater London und Buckinghamshire, England, Großbritannien, ausgewählt. Die Standorte wurden aufgrund ihrer Nähe zum Labor ausgewählt, um den schnellen Probentransport zu erleichtern und das Risiko des Verderbens zu verringern. Auf jedem Bauernhof wurden nach konventionellen Methoden verschiedene Obst- und Gemüsesorten angebaut. Für diese Studie wurde Spinat ausgewählt, da er in Gemüseanbaubetrieben weit verbreitet ist und Blattgemüse Berichten zufolge anfälliger für eine Kontamination mit Erde und parasitären Eiern in den Blattfalten ist [10]. Darüber hinaus kann Spinat ohne vorheriges Schälen oder Kochen verzehrt werden und birgt daher ein höheres Risiko einer Parasiteninfektion, wenn er ohne vorheriges Waschen eingenommen wird. Während Toxocara spp. aus Salat isoliert wurden [5, 11], wurde Salat in dieser Studie nicht für die Probenahme ausgewählt, da er aufgrund seiner Anfälligkeit für Schädlingsbefall, insbesondere durch Schnecken, nicht häufig auf Feldern kommerzieller Farmen im Vereinigten Königreich angebaut wird , und wird häufiger unter Deckung oder unter hydroponischen Bedingungen angebaut.
Die Proben wurden während der Vegetationsperiode zwischen Juni und August mithilfe eines systematischen Probenahmeansatzes gesammelt, wobei entlang jeder Kulturreihe in Abständen von etwa 1 m eine große Handvoll Blätter gepflückt wurde. Jede verfügbare Spinatreihe auf den Feldern wurde beprobt (Abb. 1). Die Proben wurden sofort zur Untersuchung ins Labor gebracht. Insgesamt wurden 120 Proben von 300 g Blättern (insgesamt etwa 36 kg) getestet, wobei je nach Standort je nach Ernteverfügbarkeit eine ähnliche Anzahl an Proben entnommen wurde (33, 25, 35 bzw. 27 Proben). Die Stichprobengröße wurde mithilfe der WinEpi-Software (www.winepi.net) unter Verwendung eines zuvor ermittelten Prävalenzwerts von 2,4 % berechnet [9].
Diagramm, das den Stichprobenansatz zeigt. Von jeder Spinatreihe wurden in Abständen von etwa 1 m Proben genommen (Pfeile). (Bild erstellt mit BioRender.com)
Um die Effizienz der Methodik zu beurteilen, wurden Experimente zur Eierzugabe mit 300-g-Proben von Salat (L. sativa) und Spinat (S. oleracea) durchgeführt. Kurz gesagt, es wurde ein einfaches Siebsystem konstruiert, das eine modifizierte Version des von Guggisberg et al. verwendeten Systems war. [11]. Das System isoliert parasitäre Eier anhand ihrer Größe, indem es sie in einem Nylonfilter konzentriert, dessen Porendurchmesser klein genug ist, um sie zurückzuhalten. Die hier verwendete Porengröße für Toxocara spp. Eier betrug 40 µm. Für die „Trichter“-Komponente wurde eine 1,5-l-Plastikflasche in zwei Teile geschnitten, gründlich gewaschen und die obere Hälfte der Flasche unter Beibehaltung des Halses/Deckels verwendet. Der Deckel wurde entfernt und perforiert und ein Einweg-Nylonfilter oben in die Flasche eingesetzt, bevor der Deckel wieder aufgeschraubt wurde, um ihn zu befestigen (Abb. 2).
Diagramm, das das Siebsystem zeigt, das zum Fangen von Toxocara spp. verwendet wird. Eier aus der Gemüsewaschlösung. (Bild erstellt mit BioRender.com)
Toxocara spp. Eier wurden von erwachsenen Würmern entnommen, die während der Obduktion aus dem Dünndarm von Füchsen entnommen wurden, und bis zur Verwendung in phosphatgepufferter Kochsalzlösung bei 4 °C gelagert. Die Eier wurden vor der Verwendung gezählt und 25-µl-Aliquote mit einer bekannten Konzentration an Eiern wurden auf 300-g-Proben von Salat und Spinat in zweifacher Ausfertigung (4, 20 und 100 Eier) aufgetragen. Die Proben wurden 1 Stunde lang trocknen gelassen, bevor sie in verschließbare Plastiktüten (30 × 40 cm) gegeben wurden. Negativkontrollproben wurden ebenfalls doppelt getestet.
Die Methode von Guggisberg et al. [11] wurde mit einigen Modifikationen verwendet. Ein 500-ml-Volumen Wasser mit 0,2 % Tween 20 wurde in jeden verschließbaren Plastikbeutel gegeben, die Oberseite versiegelt und der Beutel 30 Sekunden lang kräftig geschüttelt. Jeder Beutel wurde 5 Minuten lang aufrecht auf dem Labortisch stehen gelassen, um die Anzahl der vorhandenen Blasen zu reduzieren, bevor eine Ecke (ca. 5 mm) abgeschnitten und die Flüssigkeit in den Filtrationstrichter gegossen wurde. Der Trichter wurde in einem größeren Plastiktrichter über einem 2-Liter-Becherglas gehalten, das zum Auffangen des Filtrats verwendet wurde. Um den Filter von Rückständen zu befreien und Verstopfungen zu vermeiden, wurden Einwegpipetten verwendet. In jeden Probenbeutel wurde zum Spülen ein 200-ml-Volumen Wasser gegossen, und diese Flüssigkeit wurde auch durch das Filtersystem geleitet. Als letzte Spülung wurde ein Volumen von 100 ml Wasser in das Filtersystem gegossen.
Nachdem die gesamte Flüssigkeit durchgelaufen war, wurde der Filter aus dem System entfernt und in ein Falcon-Röhrchen mit 45 ml Wasser gegeben. Jeder Filter wurde mit 5 ml Wasser gespült, das im selben Falcon-Röhrchen aufgefangen wurde. Sämtliche Plastikartikel, Beutel und Filter wurden nur einmal verwendet und dann entsorgt. Der Inhalt jedes Falcon-Röhrchens wurde zentrifugiert (1000 g für 5 Minuten) und der Überstand verworfen. Das resultierende Pellet wurde in ein 1,5-ml-Eppendorf-Röhrchen überführt. Das Falcon-Röhrchen wurde mit einer kleinen Menge Wasser gespült, die dann in das Eppendorf-Röhrchen gegeben wurde. Die Proben wurden zentrifugiert (10.000 × g für 3 Minuten) und der Überstand entfernt. Das endgültige Pellet wurde gemäß Tyungu et al. 10 Minuten lang bei 90 °C wärmebehandelt, um die äußere Eistruktur vor der DNA-Extraktion zu schwächen. [12].
Die DNA wurde aus den Pellets mit dem Qiagen Powersoil Pro Kit (Qiagen, USA) gemäß den Anweisungen des Herstellers extrahiert, wobei die Perlen 10 Minuten lang mit voller Leistung in einem TissueLyser LT (Qiagen, USA) geschlagen wurden. Die extrahierte DNA wurde einer quantitativen Polymerasekettenreaktionsanalyse (qPCR) unterzogen, wie von Tyungu et al. beschrieben. [12], unter Verwendung eines 96-Well-C1000-Touch-PCR-Thermocyclers (Bio-Rad, USA) mit zuvor veröffentlichten Sonden für T. canis (5′-FAM-CCATTACCACACCAGCATAGCTCACCGA-3′-NFQ-MGB) und T. cati (5 ′-HEX-TCTTTCGCAACGTGCATTCGGTGA-3′-NFQ-MGB)] und Vorwärtsprimer [T. canis (5'-GCGCCAATTTATGGAATGTGAT-3′) und T. cati (5′-ACGCGTACGTATGGAATGTGCT-3′)] und gemeinsamer Reverse-Primer 5'-GAGCAAACGACAGCSATTTCTT-3′) für beide Toxocara-Arten [12]. Um das Vorhandensein von PCR-Inhibitoren in jeder Probe zu beurteilen, wurde eine im Handel erhältliche interne Amplifikationskontrolle (Internal DNA Extraction Control Kit; Primer Design, UK) gemäß den Anweisungen des Herstellers verwendet.
Alle Reaktionen wurden in einem Gesamtvolumen von 25 µL durchgeführt, das 1× SsoAdvanced Universal Probes Supermix (Bio-Rad), 5 µL Template-DNA, 0,5 µM jedes Primers und 0,25 µM jeder markierten Sonde enthielt. Die Proben wurden doppelt getestet und 3 Minuten lang bei 95 °C, anschließend 10 Sekunden lang bei 95 °C und 30 Sekunden lang bei 60 °C betrieben, also insgesamt 39 Zyklen. Als Positivkontrollen wurde genomische DNA von Toxocara canis und T. cati (45,0 bzw. 7,13 ng/µL) verwendet, die aus erwachsenen Würmern extrahiert wurde. Als Negativkontrolle wurde keine Vorlage verwendet. Eine Probe galt als positiv, wenn bei oder vor einem Zyklusschwellenwert von 38 nachweisbare DNA vorhanden war. Wenn für eine bestimmte Vertiefung ein negatives Ergebnis der internen Kontrolle erhalten wurde, wurde die entsprechende Probe erneut analysiert, wobei 3 µL DNA-Vorlage anstelle von 5 µL verwendet wurden, um dies zu minimieren das Vorhandensein von Inhibitoren.
Jede 300-g-Spinatprobe wurde wie oben beschrieben verarbeitet, wobei jedes Pellet einer DNA-Extraktion und anschließend einer Multiplex-qPCR-Analyse unterzogen wurde, um das Vorhandensein von Toxocara canis- oder T. cati-Eiern zu untersuchen. Jede Probe wurde doppelt getestet.
Die Prävalenz und ihre 95 %-Konfidenzintervalle (CIs) wurden mit der EpiTools-Software berechnet [13]. Die statistische Analyse wurde mit der GraphPad-Software (https://graphpad.com/quickcalcs) durchgeführt und der Chi-Quadrat-Test wurde zum Vergleich von Toxocara spp. verwendet. Prävalenz zwischen Standorten. Ein P-Wert < 0,05 wurde als statistisch signifikant angesehen.
Um die Siebmethode zu validieren, wurden Experimente mit 300-g-Proben von Salat- und Spinatblättern durchgeführt, die mit bekannten Konzentrationen von Toxocara-canis-Eiern versetzt waren. Für alle getesteten Eikonzentrationen (4, 20 und 100 Eier/300 g) wurden positive qPCR-Ergebnisse (Cq < 38) erhalten. Positive Kontroll-DNA-Proben ergaben einen Cq-Wert < 15, negative Kontrollproben hatten einen Cq-Wert von Null. Mit dem Assay konnte effektiv zwischen T. canis- und T. cati-Positivkontroll-DNA-Proben unterschieden werden.
Spinatproben (S. oleracea) (insgesamt 120), die jeweils 300 g Blätter enthielten, wurden von vier verschiedenen kommerziellen Gemüseanbaubetrieben im Süden Englands gesammelt und mithilfe der Siebmethode und anschließender Multiplex-qPCR-Analyse verarbeitet.
Insgesamt wurden für 30 Proben positive qPCR-Ergebnisse erhalten, von denen 28 positiv für T. canis und zwei positiv für T. cati waren. Für zwei der Proben wurden nach wiederholter qPCR-Analyse mit 3 µL DNA-Matrize anstelle von 5 µL positive T. canis-Ergebnisse erhalten, um die Wirkung etwaiger Inhibitoren zu minimieren, da zunächst negative Ergebnisse für die interne Amplifikationskontrolle erhalten wurden. Eine wiederholte Analyse ergab ein positives Ergebnis sowohl für die Proben-DNA als auch für die interne Kontroll-DNA. Die für T. canis-positiven Proben erhaltenen Cq-Werte lagen zwischen 27,21 und 37,87 und für T. cati zwischen 25,07 und 27,05. Die gesamte Toxocara spp. Die Prävalenz betrug 25,0 % (30/120) (95 %-KI 18,1–33,4 %), und die artspezifische Prävalenz betrug 23,0 % für T. canis (28/120) (95 %-KI 16,7–31,7 %) und 1,7 % für T. cati (2/120) (95 % KI 0,5–5,9 %). Die Anzahl positiver Proben an den Probenahmestellen und die zugehörigen Prävalenzwerte sind in Tabelle 1 aufgeführt. Es gab einen statistisch signifikanten Unterschied in der Anzahl positiver Proben zwischen den Betrieben (χ2 = 12,30, df = 3, P = 0,0064).
Während frühere Untersuchungen das Vorhandensein von Toxocara spp. Eier auf Gemüse, das in kleinen Gemeinschaftsgärten angebaut wurde [9], ist dies unseres Wissens nach die erste Studie, in der Gemüse, das auf größeren, kommerziellen Farmen im Vereinigten Königreich angebaut wurde, auf das Vorhandensein von Toxocara spp. getestet wurde. Eier. Der Fund von Toxocara spp. auf Spinatblättern, die auf kommerziellen Farmen angebaut werden, ist besorgniserregend, da dieses Produkt für eine große Zahl von Menschen leicht käuflich zu erwerben und zu verzehren ist. Da Spinat vor dem Verzehr nicht immer gekocht wird, besteht außerdem das Risiko, dass Verbraucher Toxocara spp. einnehmen. Die Anzahl der Eier erhöht sich, wenn die Blätter vor dem rohen Verzehr nicht gründlich gewaschen werden.
In allen vier Betrieben wurde eine Gesamtprävalenz von 25,0 % ermittelt. Es gab jedoch erhebliche Unterschiede in der Prävalenz zwischen den Standorten, wobei 45,5 % die höchste und 7,4 % die niedrigste Prävalenz waren. Diese Variation spiegelt sich in der Literatur wider, wobei in einer Studie Prävalenzen von T. cati und T. canis in Salatproben aus dem Iran von 40,2 % bzw. 33,0 % angegeben wurden [10] und in Libyen ebenfalls von 37 % bzw. 48 % Salatproben [14]. In anderen Studien wurde jedoch über weitaus geringere Prävalenzen berichtet. In der Schweiz beispielsweise ist die Prävalenz von Toxocara spp. Bei Salat lag der Wert bei 2,55 % [11] und im Iran wurden bei verzehrfertigem Gemüse Werte von 3,97 % und 1,68 % ermittelt [15, 16]. In der Türkei lag die Prävalenz bei Salat- und Petersilienproben bei nur 1,5 % [17]. Diese Unterschiede in der Prävalenz können teilweise auf die unterschiedlichen Probenahmeansätze und Testmethoden zur Gewinnung von Eiern aus Gemüse in diesen Studien zurückzuführen sein. Wie die aktuelle Studie zeigt, kann es jedoch auch große Unterschiede im Grad der parasitären Kontamination von Gemüse geben, das in landwirtschaftlichen Betrieben an verschiedenen Standorten angebaut wird.
Um zu verhindern, dass Gemüsepflanzen mit Toxocara spp. kontaminiert werden. Eier benötigen Endwirtsarten Zugang zu Ackerland für die Felder, auf denen die Pflanzen angebaut werden, oder zum Wasser, das zur Bewässerung der Pflanzen verwendet wird, damit sie mit Eiern in ihren Fäkalien kontaminiert werden. Interessanterweise gab es auf der Farm mit den meisten Toxocara-Arten. Prävalenz in dieser Studie (Farm 1) war die einzige, auf der es keine klare Richtlinie gab, die es der Öffentlichkeit untersagte, ihre Hunde auf das Gelände zu bringen. Während Hundekot sicherlich zur Umweltverschmutzung mit Toxocara spp. beitragen kann. Eiern ist Ackerland auch für Katzen und Füchse allgemein zugänglich [18, 19]. Angesichts der Tatsache, dass in dieser Studie deutlich mehr T. canis-Eier isoliert wurden als T. cati-Eier und Füchse im Allgemeinen eher mit T. canis als mit anderen Toxocara-Arten infiziert sind. [20] ist es wahrscheinlich, dass Füchse (und/oder Hunde) an diesen Standorten mehr zum Eierreservoir in der Umwelt beitragen als Katzen. Alle beprobten Betriebe verfügten nicht über Umzäunungen, sodass die Standorte für eine Vielzahl von Tierarten leicht zugänglich waren. Es besteht auch die Möglichkeit, dass die Grundstückseigentümer Haustiere hatten, die Zugang zum Ackerland hatten. Im Hinblick auf eine mögliche Verunreinigung des zur Bewässerung der Feldfrüchte verwendeten Wassers nutzten die Betriebe 1 und 3 die Leitungswasserversorgung zur Bewässerung der Anbauflächen, Betrieb 2 verwendete Wasser direkt aus einem örtlichen Fluss und Betrieb 4 nutzte Wasser aus einem selbstgebauten Reservoir . Basierend auf diesen begrenzten Beobachtungen schien es keinen offensichtlichen Zusammenhang zwischen der Wasserquelle und Toxocara spp. zu geben. Häufigkeit.
Ein weiterer Faktor, der die Kontamination von Spinat in dieser Studie beeinflusst haben könnte, waren die Wetterbedingungen während der Probenahme. Die Probenentnahme auf Betrieb 1 erfolgte nach einer starken Regenperiode, die mit einer erhöhten Menge an Bodenspritzern auf Pflanzen einherging, insbesondere auf kleineren Kulturen mit einer maximalen Höhe von 50 cm [21]. Die Wahrscheinlichkeit, dass Toxocara spp. Die Anzahl der im Boden vorhandenen Eier, die auf diese Weise auf die Oberfläche der beprobten Blätter gelangen, wurde somit erhöht. Aus Konsistenzgründen ist es vorzuziehen, Proben unter den gleichen klimatischen Bedingungen zu sammeln, um diesbezügliche Abweichungen zu minimieren. Da durch Klimaerwärmungsszenarien, auch im Vereinigten Königreich, stärkere Regenfälle vorhergesagt werden [22], könnte das Risiko der Ausbreitung von Krankheitserregern, einschließlich Toxocara spp., durch Regenspritzer auf Blattgemüse in Zukunft zunehmen.
Das Vorkommen von Toxocara spp. Eier wurden mittels qPCR-Test bestätigt. Während molekulare Ansätze die Empfindlichkeit des Parasitennachweises erhöhen können, besteht eine Einschränkung dieser Methoden darin, dass sie nicht zeigen können, ob eines der vorhandenen Eier embryoniert oder lebensfähig und somit infektiös ist. Da in der vorliegenden Studie keine mikroskopische Bestimmung der Embryonierung durchgeführt wurde, war es unmöglich zu wissen, ob die Eier das Potenzial hatten, Infektionen beim Menschen auszulösen. Wenn die Eier innerhalb von zwei Wochen vor der Probenentnahme von einem endgültigen Wirt abgelegt wurden, ist es unwahrscheinlich, dass sie embryoniert wurden [23]. Während embryonierte Eier unter geeigneten Bedingungen längere Zeit in der Umwelt verbleiben können und beim Verzehr ein Infektionsrisiko darstellen [24], ist es schwierig zu wissen, welchen Bedingungen gewonnene Eier ausgesetzt waren. Es wäre nützlich zu bestimmen, ob gewonnene Eier Missbildungen aufweisen, da diese auf Schäden durch Austrocknung und direkte Sonneneinstrahlung hinweisen können [25], was Auswirkungen auf ihre Infektiosität für den Menschen haben kann.
Darüber hinaus geben mit molekularen Methoden ermittelte Cq-Werte nur Aufschluss über die in einer Probe verfügbare DNA-Menge, die nicht nur mit der Anzahl der vorhandenen Eier, sondern auch mit deren Entwicklungsstadium variieren kann. Der Cq-Wert korreliert daher nicht direkt mit der Anzahl der Eier in einer Probe. Angesichts der Tatsache, dass Krankheiten beim Menschen bereits bei der Wanderung einer einzelnen Larve auftreten können [26], ist der Befund von Toxocara spp. DNA in Lebensmitteln, die für den öffentlichen Verzehr bestimmt sind, gibt Anlass zur Sorge. Weitere Forschungsarbeiten, die eine mikroskopische Analyse und Zählung aller gefundenen Eier umfassen, würden dazu beitragen, unser Verständnis der Risiken kontaminierter Produkte für die öffentliche Gesundheit zu vertiefen.
Die vier in dieser Studie untersuchten Betriebe befanden sich alle im Süden Englands. Obwohl Toxocara spp. Da Eier aus Feldfrüchten isoliert wurden, die an jedem Standort beprobt wurden, muss darauf geachtet werden, diese Ergebnisse nicht auf den Rest des Vereinigten Königreichs zu übertragen. Weitere Untersuchungen sind erforderlich, um die Prävalenz von Toxocara spp. zu ermitteln. Eier auf Bauernhöfen in anderen Regionen des Landes.
Aufgrund seiner Verfügbarkeit auf den untersuchten Betrieben wurde in dieser Studie nur Spinat getestet. Da es sich um ein Blattgemüse handelt, ist die Wahrscheinlichkeit einer Kontamination mit parasitären Eiern höher als bei Gemüse ohne Blattgemüse [10, 11]. Obwohl sich gezeigt hat, dass das Waschen Toxocara spp. entfernt. Eier aus Gemüse [27], Studien zur Wirksamkeit verschiedener Waschmethoden fehlen. Die wissenschaftliche Bewertung kommerzieller Waschmethoden für die Lebensmittelsicherheit konzentrierte sich hauptsächlich auf bakterielle Krankheitserreger [28, 29] und sollte daher auf Helminthen ausgeweitet werden. Es wäre auch nützlich, mehr Daten über andere Arten von Obst und Gemüse zu sammeln, die in Bodennähe wachsen, um ein klareres Bild des Risikos einer lebensmittelbedingten Übertragung von Toxocara spp. zu entwickeln. im Vereinigten Königreich.
Die Ergebnisse dieser Studie belegen das Vorhandensein von Toxocara spp. Eier auf den Blättern von Spinat, der auf kommerziellen Farmen im Süden des Vereinigten Königreichs für den öffentlichen Verzehr angebaut wird. Toxocara spp. wurde aus Produkten isoliert, die auf jedem beprobten Bauernhof angebaut wurden, wobei die Prävalenz von Toxocara spp. stark schwankte. Eier zwischen Bauernhöfen. Angesichts der potenziell schwerwiegenden Gesundheitsrisiken im Zusammenhang mit der Einnahme von Toxocara spp. Bei Eiern ist es von entscheidender Bedeutung, das öffentliche Bewusstsein dafür zu schärfen, wie wichtig es ist, Gemüse vor dem Verzehr gründlich zu waschen, insbesondere bei Gemüse, das häufig ohne vorheriges Schälen oder Kochen verzehrt wird. Darüber hinaus würde die Verbesserung der Biosicherheit landwirtschaftlicher Betriebe, um den Zugang von Endwirtsarten zu Ackerland zu minimieren, und die gründliche anthelmintische Behandlung heimischer Endwirte, die Zugang haben, das Risiko einer parasitären Kontamination des Bodens und auch der Nutzpflanzen am Ursprungsort verringern.
Die Daten werden im veröffentlichten Artikel dargestellt.
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Unzutreffend.
SH wird vom UK Research and Innovation, Biotechnology and Biological Sciences Research Council im Rahmen des FoodBioSystems Doctoral Training Programme finanziert.
School of Veterinary Medicine, University of Surrey, Daphne Jackson Road, Guildford, GU2 7AL, Surrey, Großbritannien
Sara R. Healy, Joaquin M. Prada und Martha Betson
Institut für globale Ernährungssicherheit, Queen's University, Gebäude für biologische Wissenschaften, 19 Chlorine Gardens, Belfast, BT9 5DL, Großbritannien
Eric R. Morgan
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Diese Studie wurde von SH konzipiert und koordiniert. Die technische Beratung erfolgte durch MB. Die Datenerfassung und -analyse wurde von SH durchgeführt. Der Artikel wurde von SH mit kritischer Überarbeitung und endgültiger Genehmigung der zu veröffentlichenden Version von EM, JP und MB verfasst. Alle Autoren haben das endgültige Manuskript gelesen und genehmigt.
Korrespondenz mit Martha Betson.
Gemeinsam mit der University of Surrey wurde eine Selbstbewertung für Governance und Ethik durchgeführt – Tierversuche. Eine vollständige ethische Prüfung war für die Studie nicht erforderlich.
Unzutreffend.
Die Autoren geben an, dass keine Interessenkonflikte bestehen.
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Open Access Dieser Artikel ist unter einer Creative Commons Attribution 4.0 International License lizenziert, die die Nutzung, Weitergabe, Anpassung, Verbreitung und Reproduktion in jedem Medium oder Format erlaubt, sofern Sie den/die ursprünglichen Autor(en) und die Quelle angemessen angeben. Geben Sie einen Link zur Creative Commons-Lizenz an und geben Sie an, ob Änderungen vorgenommen wurden. Die Bilder oder anderes Material Dritter in diesem Artikel sind in der Creative-Commons-Lizenz des Artikels enthalten, sofern in der Quellenangabe für das Material nichts anderes angegeben ist. Wenn Material nicht in der Creative-Commons-Lizenz des Artikels enthalten ist und Ihre beabsichtigte Nutzung nicht gesetzlich zulässig ist oder über die zulässige Nutzung hinausgeht, müssen Sie die Genehmigung direkt vom Urheberrechtsinhaber einholen. Um eine Kopie dieser Lizenz anzuzeigen, besuchen Sie http://creativecommons.org/licenses/by/4.0/. Der Creative Commons Public Domain Dedication-Verzicht (http://creativecommons.org/publicdomain/zero/1.0/) gilt für die in diesem Artikel zur Verfügung gestellten Daten, sofern in einer Quellenangabe für die Daten nichts anderes angegeben ist.
Nachdrucke und Genehmigungen
Healy, SR, Morgan, ER, Prada, JM et al. Vom Fuchs zur Gabel? Toxocara-Kontamination von Spinat aus dem Süden Englands, Großbritannien. Parasiten Vektoren 16, 49 (2023). https://doi.org/10.1186/s13071-023-05674-8
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Eingegangen: 24. November 2022
Angenommen: 18. Januar 2023
Veröffentlicht: 02. Februar 2023
DOI: https://doi.org/10.1186/s13071-023-05674-8
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